Calculateur de reconstitution peptide
Convertissez la masse d’un flacon lyophilisé et le volume de solvant en concentration de travail, puis en volume à prélever. Les trois grandeurs sont liées par une seule relation — C = m / V — et tout le reste de cette page en découle.
Calcul
Arithmétique de dilution destinée à la paillasse. Ce calculateur ne constitue ni une posologie, ni une recommandation d’administration : les produits du catalogue sont réservés à la recherche en laboratoire.
La méthode, en trois relations
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Concentration après reconstitution
C = mnette / V
La masse nette de peptide divisée par le volume de solvant. Un flacon de 10 mg dans 2 mL donne 5 mg/mL. Comme 1 mg/mL vaut exactement 1 µg/µL, la conversion vers les volumes de pipetage est immédiate et ne demande aucun facteur.
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Volume contenant une masse donnée
Vprélèvement = mcible / C
À 5 mg/mL, 250 µg occupent 50 µL. Sous 20 µL, l’incertitude de pipetage domine le résultat : reconstituez plus dilué plutôt que de prélever un volume que l’instrument ne tient pas correctement.
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Correction par la teneur nette
mnette = mflacon × teneur %
La pureté HPLC et la teneur nette en peptide sont deux mesures distinctes, et c’est la seconde qui pèse sur la concentration. Le complément est constitué de contre-ions — acétate ou TFA — et d’eau résiduelle. Un flacon annoncé à 10 mg avec 80 % de teneur nette contient 8 mg de peptide, soit 4 mg/mL et non 5 dans 2 mL. Comment lire ces deux valeurs au COA.
Questions fréquentes sur la reconstitution
Comment calculer la concentration d’un peptide reconstitué ?
La concentration est la masse de peptide du flacon divisée par le volume de solvant ajouté : C = m / V. Un flacon de 10 mg reconstitué avec 2 mL de solvant donne 5 mg/mL, soit 5 µg/µL. Le volume du lyophilisat est négligeable devant celui du solvant pour les quantités du catalogue (≤ 50 mg), il n’entre donc pas dans le calcul.
Quel volume prélever pour obtenir une masse donnée ?
Le volume à prélever est la masse cible divisée par la concentration : V = m / C. Dans une solution à 5 mg/mL, 250 µg correspondent à 0,05 mL, soit 50 µL. En dessous de 20 µL, l’erreur de pipetage devient la principale source d’incertitude : il vaut mieux reconstituer plus dilué que prélever un volume que la pipette ne tient pas.
La pureté HPLC change-t-elle le calcul ?
Non, mais la teneur nette en peptide, si. La pureté HPLC décrit la proportion du pic principal dans le chromatogramme ; la teneur nette décrit la fraction de la masse du flacon qui est réellement du peptide, le reste étant contre-ions (acétate, TFA) et eau résiduelle. Un flacon de 10 mg à 80 % de teneur nette contient 8 mg de peptide. Les deux valeurs figurent sur le certificat d’analyse du lot.
Quel solvant utiliser pour reconstituer un peptide lyophilisé ?
L’eau ultrapure stérile convient à la majorité des séquences hydrophiles. Un peptide basique (net positif) se dissout dans l’acide acétique dilué, un peptide acide (net négatif) dans l’ammoniaque dilué ou un tampon légèrement basique, et une séquence très hydrophobe demande un solvant organique — DMSO ou acétonitrile — avant dilution dans le tampon de travail. Le protocole complet est détaillé dans notre guide de reconstitution.
Combien d’aliquots faire à partir d’un flacon ?
Autant que d’expériences prévues : l’objectif est qu’aucun aliquot ne soit décongelé deux fois. Chaque cycle de congélation-décongélation dégrade le peptide par agrégation et hydrolyse, et c’est la première cause de perte de matériel au laboratoire, devant l’oxydation. Aliquoter immédiatement après reconstitution, en volumes correspondant à une manipulation unique.
Aller plus loin
- Protocole complet de reconstitution Choix du solvant par charge nette, gestes, aliquotage.
- Stabilité : ce qui dégrade un peptide Oxydation, désamidation, hydrolyse et séquences à risque.
- Lire un certificat d’analyse Pureté chromatographique contre teneur nette, ligne par ligne.
- Stockage et manipulation Températures, durées indicatives, chaîne du froid.
Références couramment reconstituées
- BPC-157 P002001 · ≥99%
- GHK-Cu P002033 · ≥99%
- Semax P002020 · ≥99%
- TB-500 (Thymosine β4 17-23) P002003 · ≥99%
Ce que garantit chaque flacon
Certificat d’analyse nominatif
HPLC et spectrométrie de masse sur le lot que vous recevez, pas sur un lot de référence. Numéro de lot imprimé sur le flacon, COA consultable avant commande.
Consulter les certificatsPureté vérifiée, teneur nette déclarée
La pureté chromatographique et la teneur nette en peptide sont deux mesures différentes. Les deux figurent au certificat — la seconde est celle que la plupart des fournisseurs omettent.
Comprendre les gradesDestiné exclusivement à la recherche
Ni médicament, ni denrée alimentaire, ni cosmétique. Aucune indication thérapeutique, aucune posologie et aucun conseil d’administration ne figure sur ce site.
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